ISSN 1995-4301
(печатной версии)

ISSN 2618-8406
(электронной версии)

Актуальные выпуски:

Выпуск № 3 за 2026 год

Выпуск № 2 за 2026 год

Выпуск № 1 за 2026 год

Выпуск № 4 за 2025 год

Обзор краткого содержания статей


РазвернутьВыбор параметров просмотра



2026 г., № 3
Раздел:
Мониторинг природных и антропогенно нарушенных территорий

Влияние пиретроидов на биохимические параметры и морфофункциональное состояние живородки речной (Viviparus viviparus L.)

Е.А. Тишина, Т.С. Дроганова, Л.В. Поликарпова, Д.А. Арешидзе, Н.В. Васильев
Исследовано влияние пиретроидов на морфофункциональное состояние и активность фермента обменного комплекса кислой фосфатазы (КФ) в тканях пищеварительной железы (гепатопанкреаса) пресноводного моллюска живородки речной (Viviparus viviparus L.). Альфа-циперметрин и лямбда-цигалотрин, применявшиеся в эксперименте, относятся к синтетическим пиретроидам. По механизму действия на насекомых они являются нейротропными веществами и используются в качестве инсектицидов в различных направлениях борьбы с насекомыми. При остром воздействии альфа-циперметрин и лямбда-цигалотрин вызывают увеличение активности КФ в 3–5 раз относительно значений, полученных в контрольной группе животных. При проведении энзим-электрофореза в опытных группах на фоне увеличения активности КФ под действием пиретроидов отмечен синтез новых множественных форм фермента в гепатопанкреасе моллюсков. При оценке морфологического состояния тканей гепатопанкреаса живородки речной отмечено появление клеток в состоянии кариопикноза, кариорексиса, кариолизиса и единичные некротизированные клетки. Полученные результаты активности и изменения в составе множественных форм КФ живородки речной в нормальных условиях и при воздействии альфа-циперметрина и лямбда-цигалотрина свидетельствуют о формировании неспецифической адаптации в ответ на действие пиретроидных пестицидов.

Нажмите, чтобы открыть

Нажмите, чтобы открыть

Нажмите, чтобы открыть

Ключевые слова: эколого-биохимический мониторинг, кислая фосфатаза, ферментативная активность, альфа-циперметрин, лямбда-цигалотрин, пиретроиды, живородка речная, множественные формы, электрофорез, морфологические изменения, гепатопанкреас

Развернуть Список процитированных источников

1. Gorbenko A.D., Morozova Ya.A., Sevostyanova E.P., Andreevskaya V.M., Kolesnikova O.A., Sevostyanov M.A. Synthetic pyrethroids and natural pyrethrins – review // Vestnik agrarnoy nauki. 2024. No. 5 (110). P. 3–15 (in Russian). doi: 10.17238/issn2587-666X.2024.5.3

2. Soderlund D.M. Molecular mechanisms of pyrethroid insecticide neurotoxicity: recent advances // Arch. Toxicol. 2012. V. 86. No. 2. P.165–181. doi: 10.1007/ s00204-011-0726-x

3. Eni G., Ibor O.R., Andem A.B., Oku E.E., Chukwuka A.V., Adeogun A.O., Arukwe A. Biochemical and endocrine-disrupting effects in Clarias gariepinus exposed to the synthetic pyrethroids, cypermethrin and deltamethrin // Comp. Biochem. Physiol. C: Toxicol. Pharmacol. 2019. V. 225. Article No.108584. doi: 10.1016/j.cbpc.2019.108584

4. Hill I.R. Effects on non-target organisms in terrestrial and aquatic environments // The pyrethroid insecticides / Ed. J.P. Leahey. Philadelphia: Taylor & Francis, 1985. P. 151–262. doi: 10.1021/bk-2008-0991.ch014

5. Zimmer E.I., Preuss T.G., Norman S., Minten B., Ducrot V. Modelling effects of time-variable exposure to the pyrethroid beta-cyfluthrin on rainbow trout early life stages // Environ. Sci. Eur. 2018. V. 30. No. 1. Article No. 36. doi: 10.1186/s12302-018-0162-0

6. Ait Ayad M., Ait Fdil M., Mouabad A. Effects of cypermethrin (pyrethroid insecticide) on the valve activity behavior, byssal thread formation, and survival in air of the marine mussel Mytilus galloprovincialis // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 60. No. 3. P. 462–470. doi: 10.1007/s00244-010-9549-7

7. Bradbury S.P., Coats J.R. Comparative toxicology of the pyrethroid insecticides // Reviews of environmental contamination and toxicology / Ed. G.W. Ware. New York: Springer-Verlag, 1989. P. 133–177. doi: 0.1007/978-1-4613-8850-0_4

8. Köprücü K., Yonar S.M., Şeker E. Effects of cypermethrin on antioxidant status, oxidative stress biomarkers, behavior, and mortality in the freshwater mussel Unio elongatulus eucirrus // Fish. Sci. 2010. V. 76. No. 6. P. 1007–1013. doi: 10.1007/s12562-010-0293-8

9. Ray M., Bhunia A.S., Bhunia N.S., Ray S. Density shift, morphological damage, lysosomal fragility and apoptosis of hemocytes of Indian molluscs exposed to pyrethroid pesticides // Fish Shellfish Immunol. 2013. V. 35. No. 2. P. 499–512. doi: 10.1016/j.fsi.2013.05.008

10. Mandal A.H., Sadhu A., Ghosh S., Saha N.C., Mossotto C., Pastorino P., Saha S., Faggio C. Evaluating the impact of neonicotinoids on aquatic non-target species: A comprehensive review // Environ. Toxicol. Pharmacol. 2025. V. 113. Article No. 104606. doi: 10.1016/j.etap.2024.104606

11. Werner I., Moran K. Effects of pyrethroid insecticides on aquatic organisms // Synthetic pyrethroids: occurrence and behavior in aquatic environments: ACS symposium series. 2008. V. 991. P. 310–335. doi: 10.1021/ bk-2008-0991.ch014

12. Gorbatov V.S., Astaikina A.A., Aptikaev R.S., Tikhonov V.V. Comparative hazard and risk assessment of pesticides for aquatic organisms // Agrokhimiya. 2019. No. 11. P. 17– 26 (in Russian). doi: 10.1134/S0002188119110061

13. Fernández San Juan M.R., Cortelezzi A., Albornoz C.B., Landro S.M., Arrighetti F., Najle R., Lavarias S.M.L. Toxicity of pyrethroid cypermethrin on the freshwater snail Chilina parchappii: lethal and sublethal effects // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2020. V. 196. Article No. 110565. doi: 10.1016/j.ecoenv.2020.110565

14. Tishina E.A., Polikarpova L.V., Droganova T.S., Lazareva A.A., Vasiliev N.V. Multiple forms of enzyme systems of gastropod molluscs under the action of pyrethroids // Anthropogenic impact on aquatic organisms and ecosystems: sbornik materialov VIII vserossiyskoy konferentsii po vodnoy ekotoksikologii, posvyashchennoy 85-letiyu so dnya rozhdeniya B.A. Flerova. Yaroslavl: Filigran, 2023. P. 109–111 (in Russian).

15. Droganova T.S., Polikarpova L.V., Konichev A.S. River snail liver protein spectrum in normal conditions and when intoxicated with lead(II) ions // Theoretical and Applied Ecology. 2019. No. 3. P. 109–113 (in Russian). doi: 10.25750/1995-4301-2019-3-109-113

16. Konin D.N., Konichev A.S. Heavy metal ions effect on proteolytic activity in the liver of Viviparus viviparus L. molluscs // Bulletin of Moscow State Regional University. Series: Natural Sciences. 2007. No 1. P. 3– 6 (in Russian).

17. Tishina E.A., Droganova T.S., Polikarpova L.V. Effect of organophosphorus compounds on changes in the qualitative composition of proteins of freshwater mollusks // Ecosystem transformation affected by natural and anthropogenic factors: materialy mezhdunarodnoy nauchnoy konferentsii. Kirov: Vyatka State University, 2019. P. 162–165 (in Russian).

18. Kovačić I., Fafanđel M., Perić L., Batel I. Effect of environmental pollutant mixtures on acid DNase activity in mussel Mytilus galloprovincialis: ex situ and in situ study / Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2017. V. 99. No. 4. P. 433–437. doi: 10.1007/s00128-017-2162-y

19. Nusetti O., Marcano L., Zapata E., Esclapés M., Nusetti S., Lodeiros C. Immunological and antioxidant enzyme responses in the pearl oyster Pinctada imbricata (Mollusca: Pteridae) exposed to sublethal levels of fuel oil // Interciencia. 2004. No 6. V. 29. P. 324–328 (in Spanish).

20. Droganova T.S., Konichev A.S., Petrenko D.B., Polikarpova L.V., Tsvetkov I.L. Influence of sodium fluoride and fluoroacetic acid on the activity of acidic DNase, acid phosphatase and the spectrum of soluble proteins of the freshwater snail, Viviparus viviparus L. // Bulletin of Moscow State Regional University. Series: Natural Sciences. 2017. No. 4. P. 36–45 (in Russian).

21. Lοwry O.H., Rοsenbrought N.J., Farr A.L., Rangal R.L. Protein measurement with the Fοlin Phenol Reagent // J. Biol. Chem. 1951. V. 193. No. 2. P. 265–275. doi: 10.1016/S0021-9258(19)52451-6

22. Andersch M.A., Szczypinski A.J. Use of p-nitrophenyl phosphate as the substrate in determination of serum acid phosphatase // Am. J. Clin. Pathol. 1947. V. 17. No. 7. P. 571–574. doi: 10.1093/ajcp/17.7_ts.571

23. Loida Z., Gossrau R., Schibler T. Enzyme histochemistry: laboratory methods. Moskva: Mir, 1982. 272 p. (in Russian).

24. Livingstone D.R. Biotechnology and pollution monitoring: use of molecular biomarkers in the aquatic environment // J. Chem. Tech. Biotechnol. 1993. V. 57. P. 195–211. doi: 10.1002/jctb.280570302

25. Narbonne J.F., Garrigues P., Ribera D., Raoux C., Mathieu A., Lemaire P., Salaun J.P., Lafaurie M. Mixedfunction oxygenase enzymes as tools for pollution monitoring: field studies on the French coast of the Mediterranean Sea // Comp. Biochem. Physiol. C Comp. Pharmacol. Toxicol. 1991. V. 100. No. 1–2. P. 37–42. doi: 10.1016/0742-8413(91)90118-d

26. Tishina E.A., Droganova T.S., Polikarpova L.V., Vasiliev N.В. Effect of phosphorus-containing pesticides on the enzymatic activity and multiple forms of acid phosphatase of river snail (Viviparus viviparus L.) // Theoretical and Applied Ecology. 2024. No. 2. P. 151 –158 (in Russian). doi: 10.25750/1995-4301-2024-2-151-158

27. Das B.K., Mukherjee S.C. Toxicity of cypermethrin in Labeo rohita fingerlings: biochemical enzymatic and haematological consequences // Comp. Biochem. Physiol. C Toxicol. Pharmacol. 2003. V. 134. No. 1. P. 109–121. doi: 10.1016/s1532-0456(02)00219-3

28. Johal M.S., Sandhu G.S., Kaur R. Effect of fenvalerate on acid and alkaline phosphatase activity in certain tissues of Heteropneustes fossilis (Bloch) // Pollut. Res. 2002. V. 21. No. 3. P. 309–313.

29. Kumar A., Sharma B., Pandey R.S. Assessment of stress in effect to pyrethroid insecticides, λ-cyhalothrin and cypermethrin, in a freshwater fish, Channa punctatus (BLOCH) // Cell. Mol. Biol. (Noisy-le-grand). 2012. V. 58. No. 1. P. 153–159.

30. Rebecchi B., Franchini A., Bolognani Fantin A.M. The digestive gland of Viviparus ater (Mollusca, Gastropoda, Prosobranchia): an ultrastructural and histochemical study // Tissue Cell. 1996. V. 28. No. 6. P.731–739. doi: 10.1016/s0040-8166(96)80076-0

31. Griffond B., Gomot L. Cultivation in vitro of organs of the fresh water gastropod prosobranch mollusk Viviparus viviparus L. // In Vitro. 1974. V. 10. P. 206–215. doi: 10.1007/BF02615234


УДК: 577.151.63+

DOI: 10.25750/1995-4301-2026-3-079-086
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License. Creative Commons License
Просмотров: 1

610000, г. Киров, ул. Московская, 36, редакция журнала «Теоретическая и прикладная экология»

Телефон/факс: (8332) 37-02-77

e-mail: envjournal@vyatsu.ru

Журнал основан в 2007 г.